Aceite puro de Saposhnikovia divaricata para a fabricación de velas e xabón, aceite esencial para difusores, novo para difusores de queimadores de paus

Aceite puro de Saposhnikovia divaricata para a fabricación de velas e xabón, aceite esencial para difusores ao por maior, novo para difusores de queimadores de paus. Imaxe destacada.

descrición curta:

2.1. Preparación da SDE

Os rizomas de SD foron adquiridos como herba seca de Hanherb Co. (Guri, Corea). Os materiais vexetais foron confirmados taxonomicamente polo Dr. Go-Ya Choi do Instituto Coreano de Medicina Oriental (KIOM). Un exemplar de referencia (número 2014 SDE-6) foi depositado no Herbario Coreano de Recursos Herbarios Estándar. Os rizomas secos de SD (320 g) foron extraídos dúas veces con etanol ao 70 % (cun refluxo de 2 h) e o extracto foi despois concentrado a presión reducida. A decocción foi filtrada, liofilizada e almacenada a 4 °C. O rendemento do extracto seco a partir dos materiais de partida brutos foi do 48,13 % (p/p).

2.2. Análise cuantitativa por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC)

A análise cromatográfica realizouse cun sistema HPLC (Waters Co., Milford, MA, EUA) e un detector de matriz de fotodíodos. Para a análise HPLC de SDE, o pri-OO estándar de glicosilcimifugina adquiriuse do Instituto Coreano de Promoción da Industria da Medicina Tradicional (Gyeongsan, Corea) eseg-O-glucosilhamaudol e 4'-O-β-D-glicosil-5-OO metilvisaminol illáronse no noso laboratorio e identificáronse mediante análises espectrais, principalmente por RMN e MS.

As mostras de SDE (0,1 mg) disolvéronse en etanol ao 70 % (10 mL). A separación cromatográfica realizouse cunha columna XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 mm, 5μm, Waters Co., Milford, MA, EUA). A fase móbil consistía en acetonitrilo (A) e ácido acético ao 0,1 % en auga (B) a un caudal de 1,0 mL/min. Utilizouse un programa de gradiente multietapa do seguinte xeito: 5 % de A (0 min), 5–20 % de A (0–10 min), 20 % de A (10–23 min) e 20–65 % de A (23–40 min). A lonxitude de onda de detección escaneouse a 210–400 nm e rexistrouse a 254 nm. O volume de inxección foi de 10,0μL. Preparáronse solucións estándar para a determinación de tres cromonas a unha concentración final de 7,781 mg/mL (prim-O-glucosilcimifuxina), 31,125 mg/ml (4'-O-β-D-glicosil-5-O-metilvisaminol) e 31,125 mg/ml (seg-O-glucosilhamaudol) en metanol e mantido a 4 °C.

2.3. Avaliación da actividade antiinflamatoriaIn vitro

2.3.1. Cultivo celular e tratamento de mostras

Obtivéronse células 264.7 en bruto da American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA, EUA) e cultiváronse en medio DMEM que contiña un 1 % de antibióticos e un 5,5 % de FBS. As células incubáronse nunha atmosfera humidificada de CO2 ao 5 % a 37 °C. Para estimular as células, o medio substituíuse por medio DMEM fresco e lipopolisacárido (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., St. Louis, MO, EUA) a 1μEngadíronse g/mL en presenza ou ausencia de SDE (200 ou 400μg/ml) durante 24 horas adicionais.

2.3.2. Determinación de óxido nítrico (NO), prostaglandina E2 (PGE2), factor de necrose tumoral-α(TNF-α) e produción de interleucina-6 (IL-6)

As células foron tratadas con SDE e estimuladas con LPS durante 24 h. A produción de NO analizouse medindo o nitrito usando o reactivo de Griess segundo un estudo previo [12]. Secreción das citocinas inflamatorias PGE2, TNF-αe a IL-6 determinouse cun kit ELISA (sistemas de I+D) segundo as instrucións do fabricante. Os efectos da SDE na produción de NO e citocinas determináronse a 540 nm ou 450 nm cun Wallac EnVision.™lector de microplacas (PerkinElmer).

2.4. Avaliación da actividade antiartríticaEn vivo

2.4.1. Animais

As ratas Sprague-Dawley macho (de 7 semanas de idade) foron adquiridas de Samtako Inc. (Osan, Corea) e aloxadas en condicións controladas cun ciclo de luz/escuridade de 12 horas a°C e% de humidade. As ratas recibiron unha dieta de laboratorio e augaa libitumTodos os procedementos experimentais realizáronse de acordo coas directrices dos Institutos Nacionais de Saúde (NIH) e foron aprobados polo Comité de Coidado e Uso de Animais da Universidade de Daejeon (Daejeon, República de Corea).

2.4.2. Indución de OA con MIA en ratas

Os animais foron aleatorizados e asignados a grupos de tratamento antes do inicio do estudo (por grupo). Solución MIA (3 mg/50μL de solución salina ao 0,9 %) inxectouse directamente no espazo intraarticular do xeonllo dereito baixo anestesia inducida cunha mestura de ketamina e xilazina. As ratas dividíronse aleatoriamente en catro grupos: (1) o grupo de solución salina sen inxección de MIA, (2) o grupo de MIA con inxección de MIA, (3) o grupo tratado con SDE (200 mg/kg) con inxección de MIA e (4) o grupo tratado con indometacina (IM) (2 mg/kg) con inxección de MIA. As ratas recibiron SDE e IM por vía oral 1 semana antes da inxección de MIA durante 4 semanas. A dosificación de SDE e IM empregada neste estudo baseouse nas empregadas en estudos previos [10,13,14].

2.4.3. Medicións da distribución da capacidade de apoio do peso nas patas traseiras

Despois da indución da OA, o equilibrio orixinal na capacidade de soporte de peso das patas traseiras alterouse. Utilizouse un probador de incapacitancia (Linton Instrumentation, Norfolk, Reino Unido) para avaliar os cambios na tolerancia ao soporte de peso. As ratas colocáronse coidadosamente na cámara de medición. A forza de soporte de peso exercida pola extremidade traseira calculouse durante un período de 3 s. A relación de distribución de peso calculouse mediante a seguinte ecuación: [peso na extremidade traseira dereita/(peso na extremidade traseira dereita + peso na extremidade traseira esquerda)] × 100 [15].

2.4.4. Medicións dos niveis de citocinas séricas

As mostras de sangue foron centrifugadas a 1500 g durante 10 minutos a 4 °C; despois, o soro foi recollido e almacenado a −70 °C ata o seu uso. Os niveis de IL-1β, IL-6, TNF-αe a PGE2 no soro medíronse empregando kits ELISA de R&D Systems (Minneapolis, MN, EUA) segundo as instrucións do fabricante.

2.4.5. Análise cuantitativa de RT-PCR en tempo real

O ARN total extraeuse do tecido da articulación do xeonllo empregando o reactivo TRI® (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA), transcribiuse inversamente a ADNc e amplificouse por PCR empregando un kit TM One Step RT PCR con SYBR green (Applied Biosystems, Grand Island, NY, EUA). A PCR cuantitativa en tempo real realizouse empregando o sistema Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Grand Island, NY, EUA). As secuencias dos cebadores e a secuencia da sonda móstranse na Táboa1Amplificáronse alícuotas de ADNc de mostra e unha cantidade igual de ADNc de GAPDH coa mestura mestra para PCR TaqMan® Universal que contiña ADN polimerase segundo as instrucións do fabricante (Applied Biosystems, Foster, CA, EUA). As condicións de PCR foron 2 min a 50 °C, 10 min a 94 °C, 15 s a 95 °C e 1 min a 60 °C durante 40 ciclos. A concentración do xene diana determinouse mediante o método Ct comparativo (número de ciclo limiar no punto de cruzamento entre a gráfica de amplificación e o limiar), segundo as instrucións do fabricante.

Prezo FOB:0,5 $ - 9.999 $ / peza

Cantidade mínima de pedido:100 pezas/pezas

Capacidade de subministración:10000 pezas por mes

Envíanos un correo electrónico

Detalle do produto

Etiquetas do produto

A osteoartrite (OA) é o trastorno musculoesquelético máis frecuente e a enfermidade articular dexenerativa máis común nas persoas maiores [1]. A artrose é unha afección causada en parte por lesións, perda da estrutura e función da cartilaxe e desregulación das vías proinflamatorias e antiinflamatorias [2,3]. Afecta principalmente á cartilaxe articular e ao óso subcondral das articulacións sinoviais e provoca unha falla articular, o que provoca dor ao soportar peso, incluíndo camiñar e estar de pé [4].

Non existe cura para a artrose, xa que é moi difícil restaurar a cartilaxe unha vez que está destruída.5]. Os obxectivos do tratamento son aliviar a dor, manter ou mellorar a mobilidade articular, aumentar a forza das articulacións e minimizar os efectos incapacitantes da enfermidade. Os tratamentos farmacolóxicos da artrose teñen como obxectivo reducir a dor para aumentar a función articular e a calidade de vida do paciente. Aínda que a destrución da cartilaxe é o principal evento na artrose, a degradación do coláxeno é o incidente fundamental que determina a progresión irreversible da artrose en asociación coa inflamación [6,7]. Espérase que os tratamentos con actividade antiinflamatoria e condroprotectora alivien a dor e manteñan a integridade da matriz en pacientes con artrose.

Polo tanto, diminuír a inflamación probablemente será beneficioso no tratamento da artrose. Estudos recentes suxiren funcións protectoras dos recursos a base de herbas na progresión da artrose, en termos de mitigación da inflamación dos condrocitos e unha maior destrución da cartilaxe, a través da súa capacidade para interactuar cos tecidos asociados ás articulacións, o que resulta na mitigación da dor articular [8].

A raíz deSaposhnikovia divaricataO schischkin (umbelliferae) utilizouse amplamente na medicina tradicional para o tratamento da dor de cabeza, a inflamación e a artrite en Corea e China [9,10]. Os diversos efectos farmacolóxicos deSaposhnikovia divaricata(SD) tamén inclúen propiedades antiinflamatorias, analxésicas, antipiréticas e antiartríticas [9,11]. Un estudo recente demostrou que o extracto de cromona SD posúe potenciais efectos antiartritis reumatoide nun modelo murino de artrite inducida por coláxeno [10]; con todo, realizáronse poucos estudos que respalden a actividade antiinflamatoria e antiartrítica deSaposhnikovia divaricataextracto (SDE).

Polo tanto, o presente estudo investigou as actividades antiinflamatorias e antiosteoartríticas dun extracto de SD ao 70 % de etanol. En primeiro lugar, avaliouse o efecto antiinflamatorio do SDE.in vitroen células RAW 264.7 inducidas por LPS. A continuación, o efecto antiosteoartrite da SDE mediuse avaliando a distribución do soporte de peso, a degradación da cartilaxe articular e as respostas inflamatorias nun modelo de rata de OA inducida por iodoacetato monosódico (MIA).